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細胞凋亡或稱程序性細胞死亡(PCD)是受基因控製的一種主動性細胞自殺過程,在形態學和生化有其明顯的特征,是有別於細胞壞死的細胞死亡方式。研究細胞凋亡的方法有很多,如形態學觀察,瓊脂糖凝膠電泳,原位末端標記法,流式細胞儀檢測等。
細胞凋亡時,形態上,早期細胞核固縮,染色體邊集在核膜內側顯新月體形,核碎裂;細胞體積變小,細胞漿和細胞器密度增高;線粒體正常或輕微腫脹;細胞膜皺折、卷曲,但早期細胞膜仍保持完整;細胞膜出泡,芽生形成膜包裹的凋亡小體,內含完整的細胞器和核碎片。在組織中,凋亡小體常迅速被鄰近細胞吞噬,由於細胞內容物不外溢,故周圍組織中無炎症反應。而細胞壞死時,細胞體積變大,線粒體明顯腫脹,在早期細胞膜的完整性即被破壞,胞漿內容物外泄,引起局部炎症反應或組織損傷。核的變化發生較晚,主要是核溶解和消失。無凋亡小體形成。
形態學是鑒定細胞凋亡最可靠的方法,主要有普通光學顯微鏡觀察方法,透射電子顯微鏡觀察方法和熒光顯微鏡觀察方法等,以下介紹普通光學顯微鏡觀察方法中的HE染色法以及熒光顯微鏡觀察方法中的吖啶橙染色法和吖啶橙/EB染色法。
方法一 蘇木素——伊紅染色(HE染色法)
【原理】蘇木素容易被氧化,其氧化產物蘇木紅與鋁結合形成一種帶正電荷的藍色色精,與帶負電荷的脫氧核糖核酸酸根吸附而使細胞核染色。染色後必須進行分化(differenciation)和藍化(blueing)處理。所謂分化,就是用某些試劑,將過度染色的或不需著色的組織成分上的顏色除去。所謂藍化是指用明礬蘇木素液深染細胞核後,通過鹽酸乙醇分化,切片從酸性環境中(此時,切片呈紅褐色)轉移至流水中使之變藍的過程。
伊紅Y(四嗅熒光素二鈉鹽)是一種酸性染料,可使細胞的胞漿染成粉紅色。
方法二 吖啶橙染色法
【原理】吖啶橙是最經典的靈敏的熒光染料,它可通過與DNA和RNA的連接堿基對和磷酸鹽基團結合,使細胞中的DNA和RNA同時染色而顯示不同顏色的熒光。吖啶橙在稀溶液中呈綠色;在濃溶液中,由於出現二聚體和多聚體而呈現橙紅色。由於DNA是高度聚合物,吸收熒光物質的位置較少,故發綠色熒光;而RNA聚合度低,能和熒光物質結合的位置多,故發紅色熒光。
方法三 吖啶橙/EB雙染色法
【原理】用吖啶橙染色可以檢測細胞凋亡,但不能區別活細胞和死細胞。溴化乙錠(EB)僅著染死細胞,可使DNA染成桔紅色,而僅很弱地結合RNA使之呈紅色。因此將吖啶橙和溴化乙錠混合使用,可根據兩種染料的吸收情況鑒定死細胞和活細胞。
方法四 瓊脂糖凝膠電泳法
【原理】在細胞凋亡過程中,內源性核酸內切酶被激活,該酶優先作用於連接DNA的核小體間區域,將DNA鏈切割成為180~200bp或其整倍數的片段。將這些DNA片段抽提出來進行瓊脂糖凝膠電泳,即可出現梯狀電泳圖譜。壞死細胞的DNA隨機降解,並伴組蛋白的降解,故在凝膠電泳時呈模糊、彌散膜狀條帶。
方法五 原位末端標記技術
細胞凋亡中,染色體DNA的斷裂是一漸進的分階段的過程,其首先在內源性核酸水解酶的作用下降解為50~300kbp的DNA大片段。然後大約30%的染色質DNA在Ca2+和Mg2+依賴的核酸內切酶作用下,從核小體間將DNA鏈切割成為180~200bp或其整倍數的寡核苷酸片段。染色體DNA雙鏈斷裂或單鏈斷裂而產生大量的粘性3'-OH末端,可在脫氧核糖核苷酸末端轉移酶(TdT)的作用下,將脫氧核糖核苷酸和熒光素、過氧化物酶、堿性磷酸酶或生物素形成的衍生物標記到DNA的3'-末端,並通過一定的顯示係統使之顯示出來,從而可對完整的單個凋亡細胞或凋亡小體進行原位染色,這類方法稱為脫氧核糖核苷酸末端轉移酶介導的缺口末端標記法(terminal -deoxynucleotidyl transferase mediated nick end labeling, TUNEL)。由於正常的或正在增殖的細胞幾乎沒有DNA的斷裂,因而沒有3'-OH形成,所以很少能夠被染色。TUNEL實際上是分子生物學與形態學相結合的研究方法,能準確地反應細胞凋亡典型的生物化學和形態特征,並可檢測出極少量的凋亡細胞,靈敏度遠比一般的組織化學法和DNA ladder測定法要高,且能早期顯示尚未發生典型形態變化的凋亡細胞,是檢測單個細胞早期出現凋亡現象的較好方法,可用於石蠟包埋組織切片、冰凍組織切片、培養的細胞和從組織中分離的細胞的細胞形態測定,因而在細胞凋亡的研究中被廣泛采用。
【原理】在TdT酶的作用下,生物素(biotin)標記的dUTP可以參入到凋亡細胞DNA斷鏈的3'-OH末端,並可與連接了過氧化物酶(POD)的親和素(streptavidin)特異結合,POD可催化底物DAB產生很強的顏色反應,特異準確地定位凋亡細胞,因而在普通光學顯微鏡下,即可觀察和計數凋亡的細胞。
方法六 亞G1峰檢測法
【原理】處於增殖周期中的細胞,根據其所處不同周期時相(Go/G1、S、G2/M),其DNA含量分布在2n~4n之間。凋亡細胞的重要特點就是細胞凋亡過程中核酸內切酶在DNA分子核小體間的降解。在乙醇固定和去垢劑處理後,凋亡細胞的細胞膜通透性增加,導致小分子DNA漏出,核DNA含量下降,以DNA特異性熒光染料染色後,形成一個DNA含量小於2n(即小於G0/G1期細胞)的分布區。 用流式細胞儀分析,可以發現在DNA直方圖上正常二倍體細胞的Go/G1峰前出現一個亞二倍體峰(Sub-G1峰,即AP峰--apoptotic peak, 也叫凋亡峰)。代表凋亡細胞。根據此亞二倍體峰可以計算凋亡細胞的百分率。
方法七 Annexin V-FITC凋亡檢測
【原理】正常活細胞帶負電的磷脂酰絲氨酸(Phosphatidylserine,PS)位於細胞膜的內側,但在細胞凋亡的早期,PS可從細胞膜的內側翻轉到細胞膜的表麵,暴露在細胞外環境中。AnnexinⅤ是一種分子量為35-36kD的Ca2+依賴性磷脂結合蛋白,能與磷脂酰絲氨酸高親和力特異性結合。以標記了FITC的AnnexinⅤ作為熒光探針,利用流式細胞儀或熒光顯微鏡可檢測細胞凋亡的發生。碘化丙啶(propidineiodide,PI)是一種核酸染料,它不能透過完整的細胞膜,但在凋亡中晚期的細胞和發生繼發壞死的細胞,PI能夠透過細胞膜而使細胞核紅染。將Annexin Ⅴ與PI匹配使用,可以將凋亡早期的細胞和晚期的細胞以及繼發壞死的細胞區分開來。
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